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Folin酚（福林酚）试剂（磷钼酸和磷钨酸混合物）跟蛋白质中含酚氨基酸（色氨酸和酪氨酸）发生颜色反应，可用于测定蛋白质浓度，但灵敏度较低。Lowry在此基础上加入Biuret（双缩脲）反应步骤，即先在碱性条件下使蛋白质和Cu+形成复合物，此复合物再使Folin酚试剂还原，发生显色反应，产物在500nm～750nm之间均可检测。Lowry法可以同时检测含芳香环基团氨基酸和肽键，故灵敏度是单独使用Folin酚的10倍左右，是双缩脲反应的200倍，因此成为早期检测蛋白浓度的主要方法。

Lowry法检测是基于还原反应，故极易受还原剂（DTT、巯基乙醇、半胱氨酸和谷胱甘肽等）、糖（果糖、蔗糖等）、含芳香环基团的氨基酸（酪氨酸和色氨酸）、甘油、钾离子、尿素、硫酸铵（铵离子具有还原性）、EDTA这些常见试剂的干扰，为此本公司对Lowry法进行改良。

• 即开即用，不需要单独购买每个成分再配制。
  
• 可以直接测定水溶性细胞成份和非水溶性细胞成份（如细胞膜系制备物，细胞膜蛋白，脂蛋白，酸沉淀物，冻干粉等）的蛋白含量。
  
• 能抵抗部分干扰物（如0.1M蔗糖、2.5mM EDTA、4M尿素和1%去污剂）的干扰。如需进一步去除还原剂等其他干扰物质，需要按附录方法处理。
  
• 检测线性范围广，在2～100μg，检测上限比经典Lowry法高30%～40%。
  
• 本试剂盒足够100次1mL体系的比色皿测定或400次0.25mL的微孔板测定。
  
• 本制品只能用于科研。

• 制备标曲液：先用去离子水将BSA标准品2mg/mL稀释到50μg/mL，然后标记1～6个1.5mL离心管，分别加入200、175、150、100、50和0μL去离子水，然后再加入0、25、50、100、150和200μL浓度为50μg/mL的BSA溶液，震荡半分钟混匀。1～6号管中BSA的浓度分别为0、6.25、12.5、25.0、37.5和50.0μg/μL。
  
• 假设有N个待测样本，每个样本做一次重复，则再标记N个1.5mL的离心管，分别加入200μL待测样本。如果重复数不止一个，则标记的试管数需要相应的调整。
  
• 新鲜配制本次实验所需的两种溶液。根据每个样本需要600μL改良Lowry染色液的比例计算所需体积并按下列方法新鲜配制（以配制10mL为例）：将10mL溶液A和0.1mL溶液B充分混匀即得改良Lowry染色液。根据每个样本需要60μL福林酚工作液的比例计算所需该液的体积并按下列方法新鲜配制（以配制10mL为例）：将5mL福林酚和5mL去离子水充分混匀即得福林酚工作液。
  
• 每管中加600μL上步制备的改良Lowry染色液，振荡混匀后室温反应10～60分钟。
  
• 每管中加入60μL福林酚工作液，振荡混匀后室温反应45分钟。
  
• 用容量为1mL、光径为1cm的玻璃比色杯或聚苯乙烯比色杯测定750nm的光吸收（由于显色物质光谱比较广，也可以选择660nm），以下简称A值。测定时，先空白（即阴性对照）后样品，测定样品和BSA标准品时，先低浓度后高浓度。测定未知样品前需要将杯子清洗干净，必要时可以用甲醇清洗吸附到比色杯壁上的染料。
  
• 以标曲样本的浓度为横轴，以其A值为纵轴，绘制标准曲线，得到线性回归方程式，然后代入待测样品的A值计算得到其对应的浓度。

同上，只是反应用96微孔板设置，各成分用量减少4～5倍（反应体积从1mL减低到250～200μL），用酶标测试仪750nm测定光吸收。

如果样品中有干扰Lowry法蛋白定量的其他物质，可用自备试剂按下法去除：用水将样品调到体积为250μL，加入25μL的0.15%去氧胆酸钠，混匀，室温放置10分钟。加入25μL的72%的TCA，室温放置5分钟。3000×g离心15分钟，小心去除上清。用200μL水溶解蛋白沉淀后以用于改良Lowry法测定。